Materia	Carrera	Plan	Año	Periodo
() BIOINFORMÁTICA	LIC. EN CIENCIAS BIOLOGICAS	8/13	2024	1° cuatrimestre

Docente	Función	Cargo	Dedicación
LAPADULA, WALTER JESUS	Prof. Responsable	P.Adj Simp	10 Hs
CARMONA VIGLIANCO, NATALIA EVE	Responsable de Práctico	JTP Exc	40 Hs
CABRERA, IVANNA MAILEN	Auxiliar de Práctico	A.1ra Simp	10 Hs

La bioinformática se ha convertido en una herramienta fundamental para las ciencias de la vida. Esto se fundamenta
especialmente en la vasta de cantidad de datos biológicos que se generan diariamente a través de estrategias de secuenciación
masiva y que resultan el pilar de investigaciones en los ámbitos de la salud, el agro, las ciencias químicas, entre otros.
Asimismo, la fortaleza de la bioinformática radica en el análisis de dichos datos en el marco de la teoría evolutiva, lo cual
permite comprender el mundo biológico de manera más acabada. La bioinformática permite comprender la información
contenida en secuencias de ácidos nucleicos y proteínas desde una perspectiva bioquímica y biofísica para obtener claves
estructurales, funcionales y evolutivas.

Objetivo general:
Introducir el uso de bases de datos y de herramientas bioinformáticas para procesar de manera crítica información biológica, mediante el análisis de datos de genes, genomas, transcriptomas y proteínas.
Objetivos específicos
-Identificar la información disponible de genes, genomas, transcriptomas y proteínas de diferentes organismos a partir del uso de bases de datos biológicas
-Adquirir experiencia en el manejo de herramientas bioinformáticas utilizadas para el análisis de genes, genomas,
transcriptomas y proteínas mediante la realización de las actividades prácticas
-Discernir el uso de las distintas herramientas para resolver problemas biológicos particulares, mediante la elaboración de un
trabajo integrador

PROGRAMA ANALÍTICO Y DE EXAMEN
Tema 1: Introducción a la bioinformática y técnicas de alto rendimiento
¿Qué es la Bioinformática?. Conceptos de genes, genomas y transcriptomas de procariotas y eucariotas. Conceptos de
Proteínas. Secuenciación de ácidos nucleicos, fundamentos, equipos y resultados obtenidos por las técnicas de primera,
segunda y tercera generación. formatos fasta y fastq.
Tema 2: Evolución y bioinformática
Evolución biológica y su relevancias para la bioinformática, Mecanismos evolutivos, mutaciones, flujo génico,
recombinación, selección natural y deriva génica. Evolución a nivel molecular, teoría del reloj molecular, teoría neutral,
concepto de homología, genes ortólogos, parálogos y xenólogos. Conceptos de familias y superfamilias génicas.
Tema 3: Alineamiento de secuencias y bases de datos
¿Qué es un alineamiento de secuencias? usos de los alineamientos de secuencias, tipos de alineamientos (locales y globales).
Métodos de alineamiento: programación dinámica, progresivo, basado en consistencia e iterativo. Sistemas de puntajes para
alineamientos de ácidos nucleicos y aminoácidos (matrices PAM y BLOSUM). Programas utilizados para realizar
alineamientos múltiples de secuencias y para su visualización. Bases de datos biológicas, NBCI, EBI. Obtención de
secuencias y metadata disponibles en bases de datos. Búsqueda de genes por homología (BLAST).
Tema 4: Herramientas utilizadas para el ensamblado y anotación de genomas
Obtención de reads, control de calidad (FASTQC), concepto de cobertura, conceptos de ensamblado de genomas por mapeo
contra referencia y de novo. Control de calidad de ensambles L50, N50. Programas usados. Anotación de genomas.
Programas de visualización Jbrowser y Artemis. Uso de la plataforma Galaxy.
Tema 5 Herramientas utilizadas para el análisis de experimentos de RNAseq
Obtención de datos disponibles en bases de datos públicas (Sequence read archives/European Nucleotide Archive). Control
de calidad (FASTQC), filtrado de secuencias, Alineamiento de Reads con genomas de referencia. Conteo y normalización
cuentas, reads per kilobases per millions (RPKM), Transcripts per million (TPM). Análisis diferencial de expresión.
Programas utilizados
Tema 6 Herramientas utilizadas para el análisis de proteínas
Plataforma Expasy. Conceptos de estructura primaria, secundaria, terciaria y cuaternaria, dominios y motivos. Clasificación
de proteínas en superfamilias y familias. Análisis de dominios mediante interpro. Predicción funcional de proteínas.
Búsqueda de proteínas PSI-BLAST, HMMER. Predicción de estructura secundaria. Clasificación estructural de proteínas por
CATH. Protein Data Bank. Predicción de estructura terciaria (SWISS-MODEL y alphafold).
Tema 7 Filogenia molecular
Teoría de árboles, formas de enraizar (grupos externo o punto medio), formato newik. Interpretación de árboles, grupos
monofiléticos, parafiléticos y polifiléticos. Flujo de trabajo para inferir una filogenia molecular. Marcadores utilizados para
realizar análisis filogenéticos, alineamiento de secuencias, Modelos de sustitución , métodos de inferencia basados en
distancia (UPGM y Neighbor joining) y basados en caracteres (Máxima Parsimonia, Máxima Verosimilitud e Inferencia
Bayesiana). Soporte de árboles por bootstrap. Visualización y edición de árboles por figtree.
Tema 8 Otras herramientas y bases de datos
VectorBase, TriTrypDB, análisis de sintenia, timetree, Identificación molecular de organismos, código de barra genético,
bold datasystem, Spling.

Trabajo práctico 1. Análisis de secuencia obtenidas por métodos de primera generación
Trabajo Práctico 2. Bases de datos NCBI, BLAST y alineamientos múltiples de secuencias
Trabajo práctico 3. Control de calidad de archivos FASTQ, ensamblado de genoma, análisis estadístico y anotación de genes
Trabajo Práctico 4. Bases de datos de transcriptomas, Estimación de TPM, Atlas-EBI
Trabajo Practico 5. Herramientas para el estudio de proteínas
Trabajo práctico 6. Filogenia Molecular
Tranajo práctico 7. Otras herramientas comúnmente utilizadas

1. TRABAJOS PRÁCTICOS
Los trabajos prácticos consisten en prácticos de informática. La aprobación de los mismos implica que el/la estudiante
demuestre un conocimiento claro del tema, participe en la clase y trabaje de manera individual, alcanzando los objetivos
fijados. Al final de cada prácticos se realizará un puesta en común donde los/las estudiantes deberán explicar como
resolvieron la ejercitación.
2. PROYECTO INTEGRADOR
Para regularizar la asignatura el/la estudiante deberá aprobar un proyecto integrador individual.
3. EXAMEN FINAL
Para aprobar el curso el estudiante deberá cumplir:
i) con los requisitos de regularización establecidos en el presente programa
ii) con la aprobación del examen final (en cualquiera de los turnos establecidos por el calendario académico de la Facultad),
cuya calificación mínima cuantitativa es de 4 (cuatro) puntos. Para rendir el examen final los alumnos deberán presentar al
Tribunal Examinador su Libreta Universitaria (Ord. 13/03- Régimen Académico de la UNSL).
Requisitos para alcanzar la regularidad:
• Realizar y aprobar el proyecto final con porcentaje mínimo de 60%
Requisitos para alcanzar la promoción sin examen final:
• Asistir al 80% de las clases
• Realizar y aprobar el proyecto final con nota mínima de 70%
La nota final resultará de promediar todas las notas obtenidas por el estudiante en las distintas instancias incluida la
participación en los trabajos prácticos. En el caso de no satisfacer alguna de las exigencias de promocionalidad, el estudiante automáticamente quedará incorporado al Régimen de Alumnos Regulares.
ALUMNOS LIBRES
El estudiante libre deberá:
• Presentar y aprobar el 100% de los trabajos prácticos
• Presentar por escrito y defender en forma oral el proyecto de integración
• Aprobar el examen final oral a programa abierto de características similares al examen regular.

[1] [1] Marco Salemi and Anne-Mieke Vandamme. The Phylogenetic Handbook. A Practical Approach to Phylogenetic. Second
[2] edition. 2009.
[3] [2] José Miguel Valderrama Martín, Francisco Ortigoza y Rafael A. Cañas. Métodos de secuenciación: segunda generación.
[4] Encuentros en la biología. VOL.XIII, No.174. 2020.
[5] [3] José Miguel Valderrama Martín, Francisco Ortigoza y Rafael A. Cañas. Métodos de secuenciación: tercera generación.
[6] Encuentros en la biología. VOL.XIII, No.175. 2020.
[7] [4] Eija Korpelainen, Jarno Tuimala, Panu Somervuo, Mikael Huss and Garry Wong. RNAseq data analysis a practical
[8] approach. 2015.
[9] [5] Supratim Choudhuri. Bioinformatics for beginners. 2014.
[10] [6] Vince Buffalo. Bioinformatics Data Skills. 2015.
[11] [7] Paul G. Higgs and Teresa K. Attwood, Blackwell. Bioinformatics and Molecular Evolution. 2005.
[12] [8] Jean-Michel Claverie and Cedric Notredame. Bioinformatics for Dummies. 2007.
[13] [9] CA Orengo, DT Jones and JM Thornton. Bioinformatics. Genes, Proteins and Computers. 2003
[14] [10] Marta Mollerach, Josefina Campos, Sabrina Di Gregorio, Tomás Poklepovich, Melina Ruggiero, María Sol Haim,
[15] Carolina Torres, Silvia Argimón. Material didáctico del curso titulado "Introducción al análisis de genomas bacterianos
[16] obtenidos por técnicas de secuenciación masiva". Universidad de Buenos Aires. 2022
[17] [11] Daniel Beiting. DIY.transcriptomics. University of Pensilvania. 2021

 

 

Tema 1: Introducción a la bioinformática y técnicas de alto rendimiento
Tema 2: Evolución y bioinformática
Tema 3: Alineamiento de secuencias y bases de datos
Tema 4: Herramientas utilizadas para el ensamblado y anotación de genomas
Tema 5 Herramientas utilizadas para el análisis de experimentos de RNAseq
Tema 6 Herramientas utilizadas para el análisis de proteínas
Tema 7 Filogenia molecular
Tema 8 Otras herramientas comúnmente utilizadas